Исследование эффективного почечного кровотока по коэффициенту очищения парааминогиппурата и максимальной секреции парааминогиппурата (ПАГ) .

Начальное вливание заключается в однократном медленном введении 3 мл 20% раствора ПАГ и 35 мл 10% инулина (вводить медленно!) или во введении того же количества растворов обоих препаратов, разведенных физиологическим раствором до 200 мл со скоростью 20 мл/мин. При определении клубочковой фильтрации путем вычисления коэффициента очищения эндогенного креатинина ограничиваются только вливанием раствора ПАГ.

Для поддерживающего вливания используется раствор, содержащий ПАГ в 0,5%, а инулин - в 2% концентрации, который вводится со скоростью 1,5-2,5 мл/мин. Оптимальная концентрация ПАГ в крови составляет 1-5 мг% .

При исследовании максимальной секреции парааминогиппурата начальное вливание заключается в однократном введении 55 мл 20% раствора ПАГ и 35 мл 10% инулина. Введение должно производиться очень медленно. Предпочтительно объем обоих растворов доводить физиологическим раствором до 250 мл и вводить капельно со скоростью 10 мл/мин.

Для поддерживающего вливания используется раствор, содержащий ПАГ в 6%, а инулин - в 2% концентрации, который вводится со скоростью 4 мл/мин. При вычислении максимальной секреции парааминогиппурата следует иметь в виду, что объем фильтруемой фракции соответствует 0,83. Концентрация парааминогиппурата должна превышать 60 мг%.

 

Определение парааминогиппурата в плазме крови и моче по Бретону и Маршаллу (Bratton, Marshall).

Реактивы:

1) раствор сульфата кадмия;

2) 1,1 N раствор NaOH;

3) 0,1% раствор NaN02 (приготовлять заново каждый 3-й день);

4) 0,5 % раствор сульфата аммония (приготовлять заново каждые 2 недели);

5) 0,1% раствор N-1 нафтилэтилендиамин-дигидрохлорида (сохранять в темной посуде);

6) 1,2 N раствор HCL .

При высоких концентрациях в плазме, применяемых для определения максимальной секреции, перед определением фильтрат плазмы разводится в отношении 1 : 750. Определение производится в параллельных пробах. Кроме того, используются «слепые» пробы.

В большую колбу отмеривают 10 мл или безбелкового фильтрата плазмы, или мочи, или воды («слепые» пробы). Добавляют по 2 мл HCL и по 1 мл азотистокислого натрия. Взбалтывают и через 3-5 минут приливают 1 мл сульфамата. Хорошо размешивают, через 3-5 минут добавляют 1 мл N-нафтилэтилендиамин-дигидрохлорида и снова взбалтывают. Через 15 минут развивается отчетливое окрашивание. Колориметрируют и по калибровочной кривой находят искомую концентрацию. Калибровочная кривая разрабатывается для диапазона колебаний концентраций от 0,001 до 0,25 мг%.

 

Определение максимальной реабсорбции глюкозы. Для начального вливания используют раствор, содержащий 30 мл 10% инулина и 60 мл 40% глюкозы. Скорость вливания 20 мл/мин.

Для поддерживающего вливания приготовляется раствор из 98 мл 10% инулина и 448 мл 40% глюкозы, который доводят до 700 мл дистиллированной водой. Скорость вливания 8 мл/мин. Оптимальная концентрация глюкозы в крови для настоящего исследования должна быть около 600 мг%.

Определение глюкозы в моче и крови производится при помощи обычных клинических способов. Ввиду существования артериовенозной разницы в содержании глюкозы следует пользоваться артериализированной кровью, полученной из мякоти пальца после 20-30-минутного погружения предплечья в горячую воду.